一、簡介

免疫(共)沉淀(IP/CoIP)試劑盒是基于抗體和蛋白的特異性親和作用，通過捕獲與蛋白或抗原特異性結合的抗體，進而從復雜的樣品中捕獲及富集目標蛋白，同時可以測定與之相互作用的蛋白或其它生物大分子。

實驗前：為了獲得更好的實驗結果，所有的步驟均需要根據實際情況進行優(yōu)化。
例如：根據細胞系或被捕獲的抗原后續(xù)用途的不同可選擇更加合適的細胞裂解條件。對于沒有細胞壁結構的哺乳動物細胞，可以直接使用去污劑進行裂解，但其它細胞，則需要一些機械剪切力輔助，例如超聲破碎。以下列出的（包括裂解液、孵育時間、體積及濃度）是作為初始嘗試的條件建議，zui終的優(yōu)化需要根據實際情況調整。

另外，細胞裂解物在進行免疫(共)沉淀前，可*行蛋白免疫印跡法檢測，以此來確定細胞裂解物里存在目標蛋白。

二、試劑盒組分

注： Lysis buffer 使用前，立刻加入 1 mM PMSF（推薦購買abs42025063，自行配制）。

三、使用方法

A. 制備細胞裂解物
1. 吸干培養(yǎng)基。添加含有調節(jié)分子的新鮮培養(yǎng)基，使其在預定的時間內對細胞進行處理。
2. 收集細胞，去除培養(yǎng)基后用冰預冷的 1X PBS 洗滌細胞一次。
3. 去除 PBS 并在每個細胞板上 (10 cm) 加入 0.5 ml 冰預冷的 Lysis buffer，并在冰上孵育至少 5分鐘。
4. 從板上刮下細胞，把提取物轉移至微量離心管。置于冰上。
5. 在冰上進行 3 次超聲破碎，每次 5 秒。
6. 在 4°C，在 14,000 x g 條件下，微量離心 10 分鐘，將上清轉移到新管中。上清液即為細胞裂解物。如有必要，裂解物可保存在 –80°C。
注：細胞裂解物制備好之后，可*行蛋白免疫印跡法檢測，以此來確定細胞裂解物里存在目標蛋白。

B. 免疫沉淀法
細胞裂解物預清除（可選步驟）
1. 向 500μl（含總蛋白 200-1000ug） 細胞裂解物中添加 5μl Protein A 和 5μl Protein G。
2. 在 4°C 下，旋轉孵育 30-60 分鐘。
3. 4°C 條件下 12000g 離心 1min，保留上清，待用。
抗原抗體結合
1. 在新的離心管內加入500μl（含總蛋白200-1000ug）細胞裂解物（可以是預清洗后的細胞裂解物）。
2. 加入目標蛋白的單克隆/多克隆抗體（1-5μg），
3. 同時采用非特異免疫的同源抗體作為對照。
4. 在 4℃輕柔混合過夜。
免疫復合物沉淀
1. 抗體孵育過夜后，加入5μl Protein A和5μl Protein G。
2. 在4℃溫和地混勻1-3小時或過夜。
3. 12000g離心1min，保留沉淀。
4. 使用0.5ml 1*Wash buffer清洗沉淀，12000g離心1min，保留沉淀。
5. 重復第4步，共計清洗3次。
注：清洗，去上清的時候需要注意避免吸走填料

C. 用蛋白免疫印跡法進行分析
1. 在 20-40 µl 1* SDS 樣品緩沖液中重懸沉淀物。渦旋振蕩，然后再微量離心 30 秒。
2. 將樣品加熱至 95–100°C 并持續(xù) 2-5 分鐘，然后在 14,000 x g 下瞬時離心 1 分鐘。
3. 將樣品 (15-30 µl) 上樣到 SDS-PAGE 凝膠上。
4. 用蛋白質印跡法分析樣品。

四、試劑盒保存方法

本試劑盒4℃保存，1年有效。