概述
隨著大家實(shí)驗(yàn)對類器官模型的需求越來越多,類器官培養(yǎng)已經(jīng)成為我們必要的一項(xiàng)實(shí)驗(yàn)技能。然而,類器官培養(yǎng)相對細(xì)胞復(fù)雜,諸多的細(xì)節(jié)需要注意,需要一個(gè)詳細(xì)的流程來指導(dǎo)我們快速掌握類器官培養(yǎng)技術(shù)。不同種類的類器官培養(yǎng)步驟大同小異,因此我們掌握了通用方法,在不同類器官上適當(dāng)調(diào)整操作步驟即可,今天小愛為大家奉上最詳類器官培養(yǎng)攻略,不看遺憾一萬年吶!??!
流程
類器官有多種培養(yǎng)方法,比如使用超低吸附培養(yǎng)板和生物反應(yīng)器,基質(zhì)膠法等,今天咱來講一講基質(zhì)膠法。
類器官原代培養(yǎng)流程
原代(以人腸癌類器官為例)
一、準(zhǔn)備工作
1、儀器設(shè)備
CO2 培養(yǎng)箱、雙人單面超凈臺、倒置顯微鏡、臺式冷凍離心機(jī)、水浴鍋(abs72023)或水浴搖床,醫(yī)用冰箱、-80℃冰箱、移液器(一套)、眼科剪、眼科鑷。
2、試劑耗材(以腸癌為例)
人腸癌類器官培養(yǎng)基試劑盒(abs9445),基質(zhì)膠(低因子、無酚紅)(abs9495),60mm細(xì)胞培養(yǎng)皿(abs7005), 100μm濾篩(abs7009),15mL離心管(abs7102),1.5mL EP管若干(abs7119),24孔細(xì)胞培養(yǎng)板(abs7058)、金屬冰盒、眼科剪刀、眼科鑷。
人腸癌類器官培養(yǎng)基試劑盒(abs9445) |
基質(zhì)膠(低因子、無酚紅)(abs9495) |
組分名稱 | 規(guī)格 |
人腸癌類器官培養(yǎng)基A | 100mL |
類器官原代培養(yǎng)緩沖液B | 250mL |
人腸癌原代組織消化液C | 30mL |
類器官傳代消化液D | 30mL |
組織保存液E | 100mL |
類器官凍存液F | 20mL |
類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G | 250mL |
二、操作流程
1、樣本準(zhǔn)備
(1)將組織放入含有預(yù)冷的(2-8°C)組織保存液E的取樣瓶中(浸沒整個(gè)組織),4℃從醫(yī)院/實(shí)驗(yàn)室取回。
(2)將取樣瓶消毒,組織取出放入培養(yǎng)皿樣本拍照,并登記,大小,顏色,軟硬程度,組織類型等信息。
2、清洗-剪碎
(1)在60mm細(xì)胞培養(yǎng)皿(abs7005)里用2-3mL原代培養(yǎng)緩沖液B浸泡。用原代培養(yǎng)緩沖液B清洗三次(每次更換培養(yǎng)皿)后剪碎,剪成大約1-3mm3的組織塊,轉(zhuǎn)移至15mL離心管。
3、消化-過濾
(2)向15mL離心管中加入5倍人腸癌原代組織消化液 C(消化液體積:組織體積=5:1,如果估量組織體積困難,使用5mL消化液通常足夠)在37℃進(jìn)行消化15-30min(消化過程中隨時(shí)觀察消化情況)。
(3)取少量液體在顯微鏡下觀察,鏡下觀察到較多的細(xì)胞團(tuán)(5-50個(gè)細(xì)胞抱團(tuán))后, 加入3倍體積原代培養(yǎng)緩沖液B (緩沖液體積:消化液體積=3:1)終止消化,用槍頭輕柔吹打可以看到液體變渾濁。
(4)使用100μm濾篩(abs7009)進(jìn)行過濾,取少量濾液在鏡下進(jìn)行觀察。將濾液收集到15mL離心管,于300g 4℃富集離心5min后移去上清。
4、加膠-點(diǎn)板-加液(這里是整個(gè)原代操作的點(diǎn)睛之筆)
(1)準(zhǔn)備工作
a 基質(zhì)膠需用金屬冰盒盛放在4℃冰箱過夜融化
b 槍頭、離心管需要-20℃提前預(yù)冷至少半小時(shí)
c 融化后的基質(zhì)膠可一直放4℃儲存,建議2周內(nèi)用完
低溫金屬冰盒(abs7289)
(2)接種要求
24孔板(abs7035),每孔25uL基質(zhì)膠細(xì)胞團(tuán)混合物,500-750uL類器官培養(yǎng)液
(3)接種密度
密度建議1:基質(zhì)膠體積:細(xì)胞團(tuán)沉淀體積=25:1(如果估摸細(xì)胞團(tuán)沉淀體積困難,通常加300uL基質(zhì)膠足夠)
密度建議2:500個(gè)細(xì)胞團(tuán)/25uL基質(zhì)膠(如果想計(jì)數(shù)接種,可以參照此密度建議)
(4)加膠-點(diǎn)板
向細(xì)胞團(tuán)沉淀加入基質(zhì)膠(abs9495),進(jìn)行吹打混勻(不要滿吹滿打,容易產(chǎn)生氣泡),然后進(jìn)行點(diǎn)板。整個(gè)操作在金屬冰盒或冰上進(jìn)行。操作熟練以后,加膠,混勻,點(diǎn)板控制在半分鐘內(nèi),有利于保持基質(zhì)膠良好的流暢性。
(5)加液
將鋪好的培養(yǎng)板放入37℃培養(yǎng)箱中40-60min成膠,添加500-750μL人腸癌類器官培養(yǎng)基A進(jìn)行培養(yǎng)。大概10-14天,多數(shù)類器官直徑在200um-500um,可進(jìn)行傳代操作。
人結(jié)腸癌-10x鋪板密度
傳代(消化分兩種情況)
一、類器官數(shù)量較多或體積較大傳代步驟
1、類器官收集及洗滌
1)收集:移液器吸去培養(yǎng)基,每孔添加1-2mL左右4℃類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G,輕柔吹散基質(zhì)膠,收集在15mL離心管中(24孔板,每5孔為一組)。
2)洗滌:加類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G定容至14mL(緩沖液越多,基質(zhì)膠被稀釋的越充分,越容易去除),4℃靜置40min或-20℃放置5min(目的是使基質(zhì)膠軟化,如果冰箱保溫效果強(qiáng),縮短冷凍時(shí)間,摸索合適的冷凍時(shí)間時(shí),可取出離心管搖晃看不到基質(zhì)膠說明冷化好了)。
3)接下來將離心管進(jìn)行300g,4℃,離心5min,離心完通常會有這兩種情況:
第一種是正常情況,分成三層(如下圖),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留類器官沉淀即可。
第二種是不正常情況,分成兩層(如下圖),這種情況可能與冷化不充分有關(guān)。此時(shí)棄掉緩沖液,留下基質(zhì)膠類器官混懸液,重復(fù)上一步洗滌步驟,再次冷化離心,通常能出現(xiàn)清晰分層(緩沖液層、基質(zhì)膠層、類器官沉淀層),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留類器官沉淀即可。如果依然是兩層(緩沖液層和基質(zhì)膠類器官混懸液層),此時(shí)棄掉緩沖液和上1/3的基質(zhì)膠類器官混懸液,保留下2/3即可。
促進(jìn)基質(zhì)膠和類器官有效分離條件:
a 離心機(jī)的選擇非常重要,水平角離心機(jī)相比固定角離心機(jī)更利于基質(zhì)膠和類器官分離;
b 離心機(jī)的溫度最好是4℃(可避免基質(zhì)膠固化),離心轉(zhuǎn)速可適當(dāng)提高(最高不要超過500g),離心時(shí)間可適當(dāng)加長(最常不超過10min)。
2、類器官消化
1)添加2-3mL類器官傳代消化液D于超凈臺內(nèi)消化2-3min,消化期間吹打1-2次。此步驟以消化成細(xì)胞團(tuán)為主,千萬不要消化成單細(xì)胞,單細(xì)胞類器官存活率低。如果不確定是否消化適宜,可吸取數(shù)微升鏡下觀察,如果有較多細(xì)胞團(tuán)可停止消化。
2)添加5倍類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G(緩沖液:消化液=5:1)終止消化,300g 4℃離心5min棄去上清(如果有基質(zhì)膠殘留,殘留量<50uL正常,不影響傳代類器官增殖)
3、加膠-點(diǎn)板-加液
(1)準(zhǔn)備工作
a 基質(zhì)膠需用金屬冰盒盛放在4℃冰箱過夜融化
b 槍頭、離心管需要-20℃提前預(yù)冷至少半小時(shí)
c 融化后的基質(zhì)膠可一直放4℃儲存,建議2周內(nèi)用完
(2)接種要求
24孔板(abs7035),每孔25uL基質(zhì)膠細(xì)胞團(tuán)混合物,500-750uL類器官培養(yǎng)液
(3)接種密度
密度建議1: 類器官通常按1:2傳代,例如,24孔板收集5孔,傳代10孔,需要的基質(zhì)膠量25*10=250uL。
密度建議2:500個(gè)細(xì)胞團(tuán)/25uL基質(zhì)膠(如果想計(jì)數(shù)接種,可以參照此密度建議)
注意:不管是按密度建議1還是,密度建議2,如果有殘留的基質(zhì)膠,新膠量至少是殘留膠量的1.5倍
(4)加膠-點(diǎn)板
向細(xì)胞團(tuán)沉淀加入基質(zhì)膠(abs9495),進(jìn)行吹打混勻(不要滿吹滿打,容易產(chǎn)生氣泡),然后進(jìn)行點(diǎn)板。整個(gè)操作在金屬冰盒或冰上進(jìn)行。操作熟練以后,加膠,混勻,點(diǎn)板控制在半分鐘內(nèi),有利于保持基質(zhì)膠良好的流暢性。
(5)加液
將鋪好的培養(yǎng)板放入37℃培養(yǎng)箱中40-60min成膠,添加500-750μL人腸癌類器官培養(yǎng)基A進(jìn)行培養(yǎng)。大概10-14天,多數(shù)類器官直徑在200-300um,可進(jìn)行傳代操作。
二、類器官數(shù)量不足或體積較小時(shí):
1、類器官收集、吹打、洗滌
(1)移液器吸去培養(yǎng)基,每孔添加1-2mL左右4℃類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G,輕柔吹散基質(zhì)膠。
(2)進(jìn)行吹打,將類器官吹成細(xì)胞團(tuán)(可取樣鏡下觀察有較多細(xì)胞團(tuán)時(shí)可停止吹打);
(3)洗滌: 24孔板,每5孔為一組,收集在15mL離心管中,加類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G定容至14mL(緩沖液越多,基質(zhì)膠被稀釋的越充分,越容易去除),4℃靜置 40min或-20℃放置5min(目的是使基質(zhì)膠軟化,如果冰箱保溫效果強(qiáng),縮短冷凍時(shí)間,摸索合適的冷凍時(shí)間時(shí),可取出離心管搖晃看不到基質(zhì)膠說明冷化好了)。
(4)接下來將離心管進(jìn)行300g,4℃,離心5min,離心完通常會有這兩種情況:
第一種是正常情況,分成三層(如下圖),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留細(xì)胞團(tuán)沉淀即可。
第二種是不正常情況,分成兩層(如下圖),這種情況可能與冷化不充分有關(guān)。此時(shí)棄掉緩沖液,留下基質(zhì)膠類器官混懸液,重復(fù)上一步洗滌步驟,再次冷化離心,通常能出現(xiàn)清晰分層(緩沖液層、基質(zhì)膠層、類器官沉淀層),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留類器官沉淀即可。如果依然是兩層(緩沖液層和基質(zhì)膠細(xì)胞團(tuán)混懸液層),此時(shí)棄掉緩沖液和上1/3的基質(zhì)膠細(xì)胞團(tuán)混懸液,保留下2/3即可。
促進(jìn)基質(zhì)膠和類器官有效分離條件:
a離心機(jī)的選擇非常重要,水平角離心機(jī)相比固定角離心機(jī)更利于基質(zhì)膠和類器官分離;
b離心機(jī)的溫度最好是4℃(可避免基質(zhì)膠固化),離心轉(zhuǎn)速可適當(dāng)提高(最高不要超過500g),離心時(shí)間可適當(dāng)加長(最常不超過10min)。
2、加膠-點(diǎn)板-加液
(1)準(zhǔn)備工作
a 基質(zhì)膠需用金屬冰盒盛放在4℃冰箱過夜融化
b 槍頭、離心管需要-20℃提前預(yù)冷至少半小時(shí)
c 融化后的基質(zhì)膠可一直放4℃儲存,建議2周內(nèi)用完
(2)接種要求
24孔板(abs7035),每孔25uL基質(zhì)膠細(xì)胞團(tuán)混合物,500-750uL類器官培養(yǎng)液
(3)接種密度
密度建議1: 對于類器官數(shù)量較少的情況,為了維持生長所需的旁分泌信號,需要2-3孔富集到1孔,例如,24孔板收集6孔,2孔富集1孔,鋪3孔,需要的基質(zhì)膠量25*3=75uL。
密度建議2:500個(gè)細(xì)胞團(tuán)/25uL基質(zhì)膠(如果想計(jì)數(shù)接種,可以參照此密度建議)
注意:不管是按密度建議1還是按密度建議2,如果有殘留的基質(zhì)膠,新膠量至少是殘留膠量的1.5倍
(4)加膠-點(diǎn)板
向細(xì)胞團(tuán)沉淀加入基質(zhì)膠(abs9495),進(jìn)行吹打混勻(不要滿吹滿打,容易產(chǎn)生氣泡),然后進(jìn)行點(diǎn)板。整個(gè)操作在金屬冰盒或冰上進(jìn)行。操作熟練以后,加膠,混勻,點(diǎn)板控制在半分鐘內(nèi),有利于保持基質(zhì)膠良好的流暢性。
(5)加液
將鋪好的培養(yǎng)板放入37℃培養(yǎng)箱中40-60min成膠,添加500-750μL人腸癌類器官培養(yǎng)基A進(jìn)行培養(yǎng)。大概7-10天,多數(shù)類器官直徑在200-300um,可進(jìn)行再次傳代。
凍存
凍存要領(lǐng):
類器官不需要消化(消化后的類器官復(fù)蘇活率低);
在類器官指數(shù)增長期凍存(等到該傳代的時(shí)候類器官活性比指數(shù)期差),也就傳代后的Day3-Day4,多數(shù)類器官直徑在100um-200um,這個(gè)時(shí)機(jī)選擇凍存。
一、類器官收集及洗滌
1、收集:移液器吸去培養(yǎng)基,每孔添加1-2mL左右4℃類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G,輕柔吹散基質(zhì)膠,收集在15mL離心管中(24孔板,每5孔為一組)。
2、洗滌:加類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G定容至14mL(緩沖液越多,基質(zhì)膠被稀釋的越充分,越容易去除),4℃靜置 40min或-20℃放置5min(目的是使基質(zhì)膠軟化,如果冰箱保溫效果強(qiáng),縮短冷凍時(shí)間,摸索合適的冷凍時(shí)間時(shí),可取出離心管搖晃看不到基質(zhì)膠說明冷化好了)。
3、接下來將離心管進(jìn)行300g,4℃,離心5min,離心完通常會有這兩種情況:
第一種是正常情況,分成三層(如下圖),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留類器官沉淀即可。
第二種是不正常情況,分成兩層(如下圖),這種情況可能與冷化不充分有關(guān)。此時(shí)棄掉緩沖液,留下基質(zhì)膠類器官混懸液,重復(fù)上一步洗滌步驟,再次冷化離心,通常能出現(xiàn)清晰分層(緩沖液層、基質(zhì)膠層、類器官沉淀層),此時(shí)棄掉上清和基質(zhì)膠層,保留類器官沉淀即可。如果依然是兩層(緩沖液層和基質(zhì)膠類器官混懸液層),此時(shí)棄掉緩沖液和上1/3的基質(zhì)膠類器官混懸液,保留下2/3即可。
促進(jìn)基質(zhì)膠和類器官有效分離條件:
a 離心機(jī)的選擇非常重要,水平角離心機(jī)相比固定角離心機(jī)更利于基質(zhì)膠和類器官分離;
b 離心機(jī)的溫度最好是4℃(可避免基質(zhì)膠固化),離心轉(zhuǎn)速可適當(dāng)提高(最高不要超過500g),離心時(shí)間可適當(dāng)加長(最常不超過10min)。
二、類器官凍存
1、凍存密度,以24孔板為例
密度建議1:2孔/mL凍存液
密度建議2:500個(gè)類器官/mL凍存液(如果想計(jì)數(shù)凍存,可以參照此密度建議)
2、添加適量類器官凍存液F,輕柔吹打重懸,建議立即進(jìn)行凍存。(放置太久,DMSO對類器官有損傷)
3、梯度凍存:將凍存管放入梯度凍存盒然后保存至-80℃過夜,第二天取出放入液氮罐。
手動凍存:4℃冰箱放置30min,轉(zhuǎn)移至-20℃放置1h,然后移至-80℃過夜,第二天取出放入液氮罐。
復(fù)蘇
一、實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備
1、將水浴鍋預(yù)熱至37℃;
2、細(xì)胞實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行常規(guī)消毒,用預(yù)防噴霧噴涂并且使用紫外線照射40min的超凈工作臺臺面;
3、在超凈工作臺中按次序擺好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)板等。
二、取出凍存管
1、根據(jù)類器官凍存記錄按標(biāo)簽找到所需類器官的編號。
2、從液氮罐中取出凍存盒,取出所需的凍存管,同時(shí)核對凍存管外的編號。
三、迅速解凍
1、迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中解凍,并要不斷地?fù)u動,使管中地液體迅速融化。
2、約1-2min后凍存管內(nèi)液體充分溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管地外壁,再拿入超凈臺內(nèi)。
四、將類器官凍存液移入15mL離心管,添加10倍體積類器官傳代培養(yǎng)緩沖液G(緩沖液體積:凍存液體積=10:1)重懸,輕柔吹打混勻,300g 4℃離心5min,棄上清。
五、加膠-點(diǎn)板-加液
1、準(zhǔn)備工作
(1)基質(zhì)膠需用金屬冰盒盛放在4℃冰箱過夜融化
(2)槍頭、離心管需要-20℃提前預(yù)冷至少半小時(shí)
(3)融化后的基質(zhì)膠可一直放4℃儲存,建議2周內(nèi)用完
2、復(fù)蘇要求
24孔板(abs7035),每孔25uL基質(zhì)膠類器官混合物,500-750uL類器官培養(yǎng)液
3、復(fù)蘇密度
復(fù)蘇密度建議1:1:1接種(原來凍幾孔就復(fù)蘇幾孔)
復(fù)蘇密度建議2:250個(gè)類器官/25uL基質(zhì)膠(如果想計(jì)數(shù)接種,可以參照此密度建議)
4、加膠-點(diǎn)板
向類器官沉淀加入基質(zhì)膠(abs9495),進(jìn)行吹打混勻(不要滿吹滿打,容易產(chǎn)生氣泡),然后進(jìn)行點(diǎn)板。整個(gè)操作在金屬冰盒或冰上進(jìn)行。操作熟練以后,加膠,混勻,點(diǎn)板控制在半分鐘內(nèi),有利于保持基質(zhì)膠良好的流暢性。
5、加液
將鋪好的培養(yǎng)板放入37℃培養(yǎng)箱中40-60min成膠,添加500-750μL人腸癌類器官培養(yǎng)基A進(jìn)行培養(yǎng)。大概10-14天,多數(shù)類器官直徑在200um-500um,可進(jìn)行傳代操作。
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